Effects of Pseudomonas TCd-1 inoculation on Cd uptake, rhizosphere soils enzyme activities and Cd bioavailability in rice (Oryza sativa) varieties with different Cd tolerance
-
摘要: 为探究假单胞菌TCd-1降低水稻镉吸收的根际生态机制, 以高镉耐性水稻品种‘特优671’和低镉耐性水稻品种‘百香139’为材料, 通过盆栽土培试验, 研究了接种TCd-1菌株对10 mg∙kg−1镉处理水稻镉吸收、根际土壤镉形态及酶活性的影响。结果表明: 接种菌株后高、低镉耐性水稻品种各部位的镉含量显著降低(P<0.05), 镉富集系数分别降低35.14%和47.79%, 转移系数无显著变化; 根际土壤可交换态镉含量分别显著降低15.89%和23.81% (P<0.05) , 铁锰氧化结合态镉含量显著提高39.58%和28.81% (P<0.05), 有机态镉含量显著提高36.11%和25.00% (P<0.05); 低镉耐性水稻品种根际土壤酸性磷酸酶、脲酶、蔗糖酶、纤维素酶和过氧化氢酶活性依次提高26.74%、12.07%、62.50%、81.17%和5.13%, 多酚氧化酶活性降低12.40%, 高镉耐性水稻的酸性磷酸酶、脲酶、蔗糖酶、纤维素酶和多酚氧化酶活性依次降低7.19%、9.39%、25.53%、16.20%和11.44%, 过氧化氢酶活性提高5.13%。可见, 假单胞菌TCd-1主要通过降低根际土壤镉的生物有效性、恢复土壤酶活性, 进而提高水稻耐镉能力并抑制水稻对镉的吸收与积累, 对高、低不同镉耐性水稻品种, 接种TCd-1菌株后其镉富集特性、根际土壤酶活性及不同镉形态含量占比均表现出显著差异。Abstract: Heavy metal contamination in rice (Oryza sativa) is a serious problem. Microbial remediation is a promising technique to reduce Cd accumulation in rice. To explore the rhizosphere-associated ecological mechanism of Pseudomonas TCd-1-induced reduction of Cd uptake in rice, two rice varieties, high Cd-tolerant variety ‘Teyou 671’ and low Cd-tolerant variety ‘Baixiang 139’, were used. A set of soil culture pots treated with 10 mg∙kg−1 Cd were employed to evaluate the effects of Pseudomonas TCd-1 inoculation on rice Cd uptake and enzymes activities in rhizosphere soils. The results showed that the Cd content in different parts of both the high and low Cd-tolerant rice varieties significantly decreased (P<0.05) after inoculation of Pseudomonas TCd-1, and the bioconcentration factor (BCF) of Cd decreased by 35.14% and 47.79% (P<0.05), respectively. However, no significant changes were found in the translocation factor (TF). Meanwhile, in rhizosphere soils of the high and low Cd-tolerant rice varieties, the content of exchangeable Cd decreased by 15.89% and 23.81% (P<0.05), Fe-Mn oxide bound Cd increased by 39.58% and 28.81% (P<0.05), and organic matter Cd increased by 36.11% and 25.00% (P<0.05), respectively. In addition, the activities of acid phosphatase, urease, saccharase, cellulase, and catalase significantly increased by 26.74%, 12.07%, 62.50%, 81.17%, and 5.13%, respectively; while the polyphenol oxidase activity decreased by 12.40% in the rhizosphere soils of low Cd-tolerant rice variety. In rhizosphere soils of high Cd-tolerant rice variety, the activities of acid phosphatase, urease, sucrase, cellulase, and polyphenol oxidase decreased by 7.19%, 9.39%, 25.53%, 16.20%, and 11.44%, respectively; while catalase activity increased by 5.13%. There were significant differences in enrichment characteristics, rhizosphere soil enzymes activities, and the proportions of different chemical forms of Cd in rhizosphere soils of different Cd-tolerant rice varieties after inoculation with the TCd-1 strain. The results indicated that inoculation with the strain may partly remediate the changes in soil enzymes activities caused by Cd pollution. In conclusion, Pseudomonas TCd-1 can improve Cd tolerance and inhibit Cd uptake and accumulation in rice, mainly by reducing the bioavailability of soil Cd and restoring the changes in soil enzymes activities caused by Cd pollution.
-
Keywords:
- Rice /
- Cd pollution /
- Pseudomonas TCd-1 /
- Soil Cd form /
- Bioavailability /
- Soil enzyme activity /
- Microbial remediation
-
稻米镉污染严重威胁我国粮食安全, 镉污染土壤是稻米镉污染的重要来源[1-2]。如何修复镉污染稻田已成为当前农业研究的热点问题。微生物修复是一种利用特定的微生物降低土壤中有害污染物活性或使污染物降解成无害物质的修复技术, 具有耗资少、操作简单且不会破坏土壤结构等优点, 被认为是最具应用前景的土壤修复技术之一[3]。陆仲烟等[4]发现伯克氏菌(Burkholderia sp.) D54能显著提高水稻(Oryza sativa)的耐镉能力, 降低水稻地上部镉含量。何小三等[5]利用铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)菌剂进行水稻镉污染修复试验, 发现添加菌剂处理后水稻‘PI312777’根、茎鞘、叶镉含量分别显著降低17.2%~41.2%、1.4%~59.9%和31.1%~62.6%。Li等[6]在镉污染土壤中接种耐镉芽孢杆菌(Bacillus megaterium) H3和根瘤菌(Neorhizobium huautlense) T1-17, 发现菌株通过降低镉的生物有效性使土壤水溶性镉降低79.0%~96.0%, 稻米镉含量降低45.0%~72.0%。汪敦飞等[7]研究发现, 铜绿假单胞菌通过提高水稻根系活力、增强水稻光合作用和抗氧化酶活性, 促进了苗期水稻的生长。Wang等[8]应用假单胞菌TCd-1处理镉污染下具有强化感作用的水稻‘PI312777’, 发现接种菌株后水稻根、茎、叶和糙米的镉含量均显著降低, 改变了土壤酶活性和镉的生物有效性。文欢欢等[9]将假单胞菌TCd-1接种到10 mg∙kg−1镉处理的高镉耐性水稻‘特优671’和低镉耐性水稻‘百香139’中, 发现该菌通过提高水稻根系活力和光合作用, 促进了水稻的生长, 并显著降低分蘖期、抽穗期、成熟期水稻各部位的镉含量, 且不同镉耐性水稻品种间存在明显的差异。但假单胞菌TCd-1影响不同镉耐性水稻镉吸收及其根际过程的机理尚不清楚。为此, 本研究将从假单胞菌TCd-1菌株影响水稻根际土壤酶活性、镉生物有效性的角度, 阐明菌株降低不同镉耐性水稻镉吸收的根际微生态机制, 以期为其应用菌株修复镉污染水稻提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
高镉耐性水稻品种‘特优671’(TY)和低镉耐性水稻品种‘百香139’(BX)均为课题组前期从近年我国主栽的238份水稻品种中筛选得到[10]。供试菌株假单胞菌TCd-1为课题组前期从水稻根际土壤筛选得到的耐镉菌株(专利号: CN103952333A)。菌悬液培养条件: 牛肉膏0.5%, 酵母粉1.0%, 氯化镁0.5%, pH 6.3, 温度33 ℃, 接菌量1.25%, 转速160 rpm, 培养24 h后用于接种。接种前取菌悬液100 mL在4 ℃、12 000 rpm下离心15 min, 去上清液, 菌株沉淀物用无菌水稀释至100 mL, 稀释后的菌液浓度测定为(5.33±0.24)×1010 cells∙mL−1。盆栽土壤取自福建农林大学水稻田, 基本理化性质为: pH 5.8, 全氮为0.31 g∙kg−1, 全磷为0.38 g∙kg−1, 全钾为0.46 g∙kg−1, 有机质为25.40 g∙kg−1, 总镉含量为0.18 mg∙kg−1。
1.2 水稻盆栽管理与取样
试验于2019年3—7月在福建农林大学生命科学学院温室中进行。在直径18 cm、高15 cm的塑料盆钵加入2.5 kg水稻土, 每盆施氮肥(以纯N计) 375 mg、磷肥(以P2O5计) 250 mg和钾肥(以K2O计) 250 mg。土壤镉处理采用氯化镉(AR), 镉处理浓度为10 mg∙kg−1(以纯镉计), 每周混匀搅动一次, 陈化4周后用于水稻栽培。在3叶1心期, 选择长势一致的水稻秧苗, 每盆移栽1株。待水稻返青后接种TCd-1菌株, 接种量20 mL∙kg−1 (即每千克土壤接种20 mL 稀释后的TCd-1菌液)。试验共设4个处理, 各处理3次重复: 1) CK: 不加镉且不接种菌株; 2) Cd: 加镉但不接种菌株; 3) CKB: 不加镉但接种菌株; 4) CdB: 加镉且接种菌株。
试验期间定期浇水, 保持浅水2~3 cm。在水稻成熟期取样, 取样时将水稻整株取出, 采用抖落法采集根际土壤, 置于室内自然风干, 过100目筛后用于酶活性及镉形态分析。收获的水稻洗净根部后将其分为根、地上部和籽粒3个部位, 分别置于烘干箱105 ℃杀青1 h后, 72 ℃烘干至恒重, 测定生物量。
1.3 根际土壤酶活性测定方法
参照《土壤酶及其研究法》[11], 测定土壤酸性磷酸酶(ACP)、脲酶(URE)、蔗糖酶(SUC)、纤维素酶(CUE)、过氧化氢酶(CAT)和多酚氧化酶(PPO)活性。
1.4 根际土壤镉形态与含量的测定
土壤镉形态提取方法参照Tessier等[12]的5步连续提取法, 将土壤中的镉分为可交换态(exchangeable cadmium, EXC-Cd)、碳酸盐结合态(carbonate bound cadmium, Crab-Cd)、铁锰氧化物结合态(Fe-Mn oxides bound cadmium, FeMnO2-Cd)、有机结合态(organic matter cadmium, OM-Cd)以及残渣态(residual cadmium, RES-Cd) 5 种形态, 各提取态经HClO4-HNO3消解、定容后用火焰原子吸收分光光度法测定镉含量。
1.5 水稻植株镉含量测定
将各部位植物干样磨成粉末状, 称取0.50 g置于硬质玻璃试管中, 采用HClO4-HNO3法消解样品, 消解液经0.22 μm滤膜过滤、定容后, 采用火焰原子吸收分光光度法测定镉含量。全株镉含量为各部位镉含量的加权平均值, 镉富集系数(BCF)=全株镉含量/土壤镉含量, 转移系数(TF)=地上部镉含量/根部镉含量, 镉富集量=各部位的镉含量×生物量。
1.6 数据处理与统计分析
采用Excel 2016和SPSS 25.0软件对数据进行统计分析。采用单因素(One-way ANOVA)和Duncan法进行方差分析和多重比较(α=0.05), 用Pearson相关系数对水稻镉含量、镉富集量、土壤酶及土壤镉形态进行相关分析。利用Excel 2016和Origin 2021b软件进行作图。图表中数据为平均值±标准差。
2. 结果与分析
2.1 假单胞菌TCd-1对不同镉耐性水稻品种镉富集能力的影响
多因素方差分析表明(表1), 水稻各部位镉含量、镉富集量、镉富集系数(BCF)及转移系数(TF)在不同镉耐性水稻品种(V)、镉处理(Cd)及菌处理(B)间均存在显著差异(P<0.05), 其中BCF与菌处理和水稻品种×菌处理间无显著相互作用, 籽粒镉富集量与水稻品种间无显著相互作用, 地上部和籽粒镉富集量与水稻品种×镉处理间无显著的相互作用, 其余各指标在水稻品种、镉处理及菌处理两两因素及三因素间存在显著的互作关系。
表 1 菌和Cd互作处理对不同镉耐性水稻各部位镉含量、富集系数(BCF)、转移系数(TF)及镉富集量的影响Table 1. Effects of Pseudomonas TCd-1, Cd and their interaction on Cd contents, bioconcentration factor (BCF), translocation factor (TF) and Cd accumulation of different Cd-tolerant varieties of rice处理
Treatment镉含量 Cadmium content (mg∙kg−1) 富集系数
BCF转移系数
TF镉富集量 Cadmium accumulation (μg∙plant−1) 根部
Root地上部
Aerial part籽粒
Grain全株
Whole plant根部
Root地上部
Aerial part籽粒
Grain全株
Whole plantTY-CK 0.28±0.04g 0.05±0.02f 0.03±0.00d 0.09±0.02e 0.52±0.10de 0.18±0.03d 4.05±0.31f 3.51±1.06f 0.99±0.24d 7.56±1.38f TY-CKB 0.33±0.03g 0.09±0.03f 0.06±0.01d 0.12±0.03e 0.67±0.18cde 0.26±0.08d 4.07±0.22f 6.99±2.58f 2.25±0.38d 11.06±2.88f TY-Cd 35.72±0.21a 3.47±0.21c 0.84±0.01b 7.53±0.42b 0.74±0.04cd 0.10±0.01e 342.60±13.33a 231.57±5.70b 28.94±2.62a 574.17±16.71a TY-CdB 24.83±0.10b 2.07±0.10d 0.60±0.03c 4.93±0.16c 0.48±0.02e 0.08±0.00e 227.06±5.92b 131.69±6.66c 20.37±1.46c 358.75±12.58b BX-CK 0.55±0.03f 1.50±0.06e 0.02±0.01d 1.39±0.05d 7.74±0.28b 2.75±0.08d 3.84±0.33f 81.81±3.74c 0.67±0.31d 85.64±4.01e BX-CKB 1.69±0.07e 1.46±0.02e 0.08±0.02d 1.49±0.02d 8.26±0.10a 0.86±0.04b 16.13±0.57e 100.47±5.83d 2.69±0.67d 116.60±6.40d BX-Cd 13.18±0.02c 8.47±0.43a 1.33±0.01a 9.07±0.40a 0.89±0.39c 0.64±0.03c 65.34±2.39c 289.05±8.20a 22.96±2.22b 354.38±10.56b BX-CdB 6.30±0.06d 4.52±0.25b 0.81±0.08b 4.74±0.23c 0.47±0.02e 0.72±0.03c 45.87±1.03d 235.69±1.55b 22.98±1.09b 281.56±2.33c 显著性 Significance 水稻品种
Rice variety (V)** ** ** ** ** ** ** ** NS ** 镉处理
Cadmium treatment (Cd)** ** ** ** ** ** ** ** ** ** 菌处理
Bacterial treatment (B)** ** ** ** NS ** ** ** * ** V×Cd ** ** ** ** ** ** ** NS NS ** V×B ** ** ** ** NS ** ** ** ** ** Cd×B ** ** ** ** ** ** ** ** ** ** V×Cd×B ** ** ** ** * ** ** ** ** ** 表中同列不同小写字母表示处理间在 P<0.05水平差异显著; *和**分别表示在 P<0.05和 P<0.01水平差异显著; NS表示无显著性差异。TY: 高镉耐性水稻品种‘特优671’; BX: 低镉耐性品种‘百香139’; CK: 不加镉且不接种菌株; CKB: 不加镉但接种菌株; Cd: 加镉但不接种菌株; CdB: 加镉且接种菌株。In the table, different lowercase letters in the same column mean significant differences among treatments at P<0.05. * and ** mean significant differences at P<0.05 and P<0.01, respectively. NS means no significant difference. TY: high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’; BX: low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139; CK: control treatment without Cd and Pseudomonas TCd-1; CKB: control treatment without Cd but with Pseudomonas TCd-1 inoculation; Cd: treatment of 10 mg·kg−1 Cd; CdB: treatment with inoculation of Pseudomonas TCd-1 and 10 mg·kg−1 Cd. 由表1可知, CK处理下, 接种菌株后水稻品种‘特优671’各部位的镉含量、镉富集量和富集系数(BCF)、转移系数(TF)均未发生显著性变化; 水稻品种‘百香139’除根部镉含量显著提高207.27%(P<0.05)外其余部位镉含量均无显著变化, 而根部、地上部及全株镉富集量依次显著提高320.05%、22.81%和36.15% (P<0.05), TF显著下降68.73% (P<0.05), BCF提高6.72%。10 mg∙kg−1镉处理下, 接种菌株后水稻‘特优671’根部、地上部、籽粒及全株镉含量依次显著下降30.49%、40.35%、28.57%、34.53% (P<0.05), 镉富集量依次下降33.72%、43.13%、29.61%、37.52% (P<0.05), BCF下降35.14% (P<0.05), 但对TF无显著影响; 水稻‘百香139’根部、地上部、籽粒及全株镉含量依次显著下降52.20%、46.64%、39.10%、47.74% (P<0.05), 镉富集量依次下降29.80%、18.46%、0.09%、20.55% (P<0.05), BCF显著下降47.19% (P<0.05), 对TF亦无显著影响。结果表明镉污染条件下接种菌株能显著降低不同镉耐性水稻品种各部位的镉含量及镉富集量。
2.2 假单胞菌TCd-1对水稻根际土壤酶活性的影响
多因素方差分析表明(表2), 水稻根际土壤ACP、URE、CUE、CAT活性在水稻品种、镉处理及菌处理间均存在显著差异(P<0.05或P<0.01), 且水稻品种与镉处理、水稻品种与菌处理间均存在显著的相互作用; 镉处理及菌处理互作对URE和CUE活性有极显著影响(P<0.01); SUC活性在水稻品种间差异显著, 水稻品种及镉处理间对PPO活性存在显著互作效应(P<0.05), 水稻品种、水稻品种×镉处理和水稻品种×菌处理以及水稻品种×镉处理×菌处理对SUC活性有极显著影响(P<0.01), 水稻品种×镉处理、镉处理×菌处理间对PPO活性存在显著的相互作用(P<0.05)。可见不同镉耐性水稻品种的根际土壤酶活性存在显著差异, 菌和镉处理均显著影响两个水稻品种的根际土壤酶活性。
表 2 菌和Cd互作处理对不同镉耐性水稻品种根际土壤酶活性的影响Table 2. Effect of Pseudomonas TCd-1, Cd and their interaction on enzymes activities in rhizosphere soil of different Cd-tolerant varieties of rice处理
Treatment酸性磷酸酶
Acid phosphatase (ACP)
[mg∙g−1(FW)∙(24 h)−1]脲酶
Urease (URE)
[mg∙g−1(FW)∙
(24 h)−1]蔗糖酶
Sucrase (SUC)
[mg∙g−1(FW)∙
(24 h)−1]纤维素酶
Cellulase
(CUE)
[mg∙g−1(FW)∙(24 h)−1]过氧化氢酶
Catalase
(CAT)
[mL∙g−1(FW)∙(20 min−1]多酚氧化酶
Polyphenol oxidase (PPO)
[mg∙g−1(FW)∙
(24 h)−1]TY-CK 1.06±0.01d 1.47±0.02f 0.46±0.01a 13.02±0.86b 0.46±0.01a 16.16±1.00a TY-CKB 1.20±0.01c 1.49±0.00f 0.46±0.03a 14.09±0.11a 0.45±0.00a 17.07±0.30a TY-Cd 1.39±0.01a 1.81±0.02c 0.47±0.02a 14.44±0.34a 0.39±0.00c 16.08±0.48a TY-CdB 1.29±0.01b 1.64±0.00e 0.35±0.00c 12.10±0.50c 0.41±0.01b 14.24±0.77b BX-CK 0.98±0.01e 2.16±0.01a 0.29±0.01d 8.88±0.030d 0.36±0.00d 14.59±0.46b BX-CKB 0.96±0.01e 1.33±0.02g 0.29±0.00d 9.18±0.13d 0.39±0.01c 16.01±0.74a BX-Cd 0.86±0.00f 1.74±0.02d 0.24±0.01e 7.70±0.030e 0.39±0.00c 16.37±0.75a BX-CdB 1.09±0.12d 1.95±0.03b 0.39±0.02b 13.95±0.04a 0.41±0.01b 14.34±0.24b 显著性 Significance 水稻品种
Rice variety (V)** ** ** ** ** * 镉处理
Cd treatment (Cd)** ** NS ** ** * 菌处理
Bacterial treatment (B)** ** NS ** ** * V×Cd ** ** ** ** ** * V×B * ** ** ** ** NS Cd×B NS ** NS ** NS ** V×Cd×B ** ** ** ** ** NS 表中同列不同小写字母表示处理间在P<0.05水平差异显著; *和**分别表示在P<0.05和P<0.01水平差异显著; NS表示无显著性差异。TY: 高镉耐性水稻品种‘特优671’; BX: 低镉耐性品种‘百香139’; CK: 不加镉且不接种菌株; CKB: 不加镉但接种菌株; Cd: 加镉但不接种菌株; CdB: 加镉且接种菌株。In the table, different lowercase letters in the same column mean significant differences among treatments at P<0.05. * and ** mean significant differences at P<0.05 and P<0.01, respectively. NS means no significant difference. TY: high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’; BX: low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139; CK: control treatment without Cd and Pseudomonas TCd-1; CKB: control treatment without Cd but with Pseudomonas TCd-1 inoculation; Cd: treatment of 10 mg·kg−1 Cd; CdB: treatment with inoculation of Pseudomonas TCd-1 and 10 mg·kg−1 Cd. 由表2可知, CK处理下, 接种菌株后‘特优671’根际土壤中ACP和CUE活性分别比CK提高13.21%和8.22% (P<0.05), 其余酶活性无显著差异; ‘百香139’根际土壤中URE活性降低38.43% (P<0.05), CAT和PPO活性分别提高8.33%和9.73% (P<0.05), 其余酶活性无显著差异。
10 mg·kg−1镉处理下,‘特优671’根际土壤中的ACP、URE和CUE活性比CK处理分别显著提高31.13%、23.13%和10.91% (P<0.05), CAT活性降低15.22%; 与Cd处理相比, 接种菌株后ACP、URE、SUC、CUE和PPO活性分别降低7.19%、9.39%、25.53%、16.20%和11.44% (P<0.05), CAT活性提高5.13% (P<0.05)。Cd处理下, ‘百香139’根际土壤CAT和PPO活性比CK处理 分别显著提高8.33%和12.20% (P<0.05), ACP、URE、SUC和CUE活性分别显著降低12.24%、19.44%、17.24%和13.29% (P<0.05); 接种菌株后除PPO活性降低12.40%外(P<0.05), ACP、URE、SUC、CUE和CAT活性分别提高26.74%、12.07%、62.50%、81.17%和5.13% (P<0.05)。结果表明,镉处理下6种土壤酶对两种水稻根际土壤的响应存在相反的差异表现,且添加假单胞菌TCd-1均能显著恢复由镉对土壤酶活性带来的影响。
2.3 假单胞菌TCd-1对水稻根际土壤镉形态的影响
多因素方差分析表明(表3), 水稻根际土壤中FeMnO2-Cd含量在水稻品种、镉处理及菌处理间均存在显著的相互作用(P<0.05或P<0.01), EXC-Cd、Crab-Cd、FeMnO2-Cd和RES-Cd含量在水稻品种间差异显著, 镉处理及菌处理互作对EXC-Cd、FeMnO2-Cd和OM-Cd含量有显著影响, 且镉处理对5种形态的镉都有极显著的影响(P<0.01), 水稻品种×镉处理和水稻品种×菌处理以及水稻品种×镉处理×菌处理对Crab-Cd含量有显著影响(P<0.05)。
表 3 菌和镉互作处理对不同镉耐性水稻根际土壤中不同形态镉含量的影响Table 3. Effect of Pseudomonas TCd-1, Cd and their interaction on different forms of cadmium in rhizosphere soil of different Cd-tolerant varieties of rice处理
Treatment可交换态镉
Exchangeable cadmium
(EXC-Cd)碳酸盐结合态镉
Carbonate bound cadmium
(Crab-Cd)铁锰氧化结合态镉
Fe-Mn oxides bound cadmium
(FeMnO2-Cd)有机态镉
Organic matter cadmium
(OM-Cd)残渣态镉
Residual cadmium
(RES-Cd)mg·kg−1 TY-CK 0.08±0.00e 0.04±0.00c 0.03±0.00d 0.01±0.01c 0.01±0.00c TY-CKB 0.06±0.01e 0.05±0.01c 0.03±0.00d 0.02±0.00c 0.01±0.00c TY-Cd 4.09±0.55a 2.05±0.30a 1.92±0.29b 0.72±0.12b 0.59±0.09b TY-CdB 3.44±0.28b 1.81±0.15a 2.68±0.20a 0.98±0.08a 0.70±0.06b BX-CK 0.04±0.01e 0.02±0.01c 0.02±0.00d 0.01±0.00c 0.07±0.01c BX-CKB 0.05±0.01e 0.02±0.01c 0.01±0.00d 0.01±0.00c 0.08±0.01c BX-Cd 2.73±0.11c 1.39±0.23b 0.59±0.03c 0.80±0.07b 3.94±0.53a BX-CdB 2.08±0.14d 1.85±0.11a 0.76±0.05c 1.00±0.08a 4.07±0.24a 显著性 Significance 水稻品种 Rice variety (V) ** * ** NS ** 镉处理 Cadmium treatment (Cd) ** ** ** ** ** 菌处理 Bacterial treatment (B) * NS ** ** NS V×Cd ** * ** NS ** V×B NS * * NS NS Cd×B * NS ** ** NS V×Cd×B NS * * NS NS 表中同列不同小写字母表示处理间在P<0.05水平差异显著; *和**分别表示在P<0.05和P<0.01水平差异显著; NS表示无显著性差异。TY: 高镉耐性水稻品种‘特优671’; BX: 低镉耐性品种‘百香139’; CK: 不加镉且不接种菌株; CKB: 不加镉但接种菌株; Cd: 加镉但不接种菌株; CdB: 加镉且接种菌株。In the table, different lowercase letters in the same column mean significant differences among treatments at P<0.05. * and ** mean significant differences at P<0.05 and P<0.01, respectively. NS means no significant difference. TY: high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’; BX: low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139; CK: control treatment without Cd and Pseudomonas TCd-1; CKB: control treatment without Cd but with Pseudomonas TCd-1 inoculation; Cd: treatment of 10 mg·kg−1 Cd; CdB: treatment with inoculation of Pseudomonas TCd-1 and 10 mg·kg−1 Cd. 由表3可知, CK处理下, 不同镉耐性水稻根际土壤各种镉形态含量及占比具有显著差异, ‘特优671’根际土壤EXC-Cd含量占比最大, 达47.06%; ‘百香139’根际土壤中的RES-Cd含量占比最大, 达43.75%; 接种菌株后两种水稻根际土壤中的 5种镉形态含量均未发生显著性变化。在10 mg·kg−1镉处理下, 接种菌株后‘特优671’根际土壤中EXC-Cd和Crab-Cd含量分别降低15.89% (P<0.05)和11.71%, 而FeMnO2-Cd、OM-Cd和RES-Cd含量分别升高39.58% (P<0.05)、36.11% (P<0.05)和18.64%。与Cd处理相比, CdB处理下‘百香139’根际土壤中EXC-Cd含量降低23.81% (P<0.05), 而Crab-Cd、FeMnO2-Cd、OM-Cd和RES-Cd含量依次升高33.09% (P<0.05)、28.81%、25.00% (P<0.05)和3.30%。
2.4 稻米镉含量与土壤镉形态及土壤酶活性的相关性
如图1A所示, 在未接种菌株处理下, ‘特优671’植株根部、地上部及籽粒的镉含量及镉富集量与根际土壤中EXC-Cd、Crab-Cd、FeMnO2-Cd、OM-Cd、RES-Cd等5种形态镉含量以及URE、ACP、CUE活性均呈显著正相关(P<0.05), 与CAT活性呈显著负相关(P<0.05); ‘百香139’各部位的镉含量及镉富集量与根际土壤中5种形态镉含量和PPO、CAT等酶活性均呈显著正相关(P<0.05), 而与URE、ACP、SUC、CUE活性显著负相关(P<0.05)。
图 1 高镉耐性(上三角矩阵)和低镉耐性(下三角矩阵)水稻接种假单胞菌TCd-1前(A)后(B)的镉含量、镉富集量、土壤酶活性及镉形态的相关性Whole plant Cd: 全株镉含量; Root Cd: 根镉含量; Aerial part Cd: 地上部镉含量; Grain Cd: 籽粒镉含量; Root Cd accumulation: 根部镉富集量; Grain Cd accumulation: 籽粒镉富集量; Aerial part Cd accumulation: 地上部镉富集量; Whole plant Cd accumulation: 全株镉富集量; PPO: 多酚氧化酶活性; CAT: 过氧化氢酶活性; URE: 脲酶活性; ACP: 酸性磷酸酶活性; SUC: 纤维素酶活性; CUE: 蔗糖酶活性; EXC-Cd: 可交换态镉含量; Crab-Cd: 碳酸盐结合态镉含量; FeMnO2-Cd: 铁锰氧化物结合态镉含量; OM-Cd: 有机结合态镉含量; RES-Cd: 残渣态镉含量。蓝色表示负相关, 红色表示正相关, 颜色越深, 相关性越强。右边的数值代表Pearson相关性指数。Figure 1. Correlation among Cd content, Cd accumulation, soil enzyme activity and soil Cd forms contents for high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’ (upper triangular matrix) and low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139’ (lower triangular matrix) before (A) and after (B) Pseudomonas TCd-1 inoculationPPO: polyphenol oxidase activity; CAT: catalase activity; URE: urease activity; ACP: acid phosphatase activity; SUC: cellulase activity; CUE: invertase activity; EXC-Cd: exchangeable Cd content; Crab-Cd: carbonate bound Cd content; FeMnO2-Cd: Fe-Mn oxides bound Cd content; OM-Cd: organic matter Cd content; RES-Cd: residual Cd content. Blue indicates a negative correlation, red indicates a positive correlation, the darker the color, the stronger the correlation. The numbers on the right represent the Pearson index.由图1B可知, 接种菌株后, ‘特优671’植株根部、地上部及籽粒不同部位镉含量和镉富集量与5种土壤镉形态、URE和ACP活性呈显著正相关(P<0.05), 与根际土壤PPO、CAT、SUC、CUE活性呈显著负相关(P<0.05); ‘百香139’各部位镉含量及镉富集量与根际土壤中URE、SUC、CUE活性及5种土壤镉形态均呈显著正相关(P<0.05), 而与PPO呈显著负相关(P<0.05)。
3. 结论与讨论
3.1 假单胞菌TCd-1通过降低不同镉耐性水稻品种的镉富集能力减轻了镉污染
植物对镉吸收能力主要取决于其物种特性, 同时受多种因子调控[13]。根系是植物从土壤中吸收镉的重要器官, 也是植物积累镉的主要部位[14]。研究表明, 在土壤背景条件下, 低耐性水稻品种根部和地上部的镉含量显著高于高耐性水稻品种, 其BCF、TF亦显著高于高耐性水稻品种, 表现出更强的镉吸收与转运能力(表1); 接种假单胞菌TCd-1能够进一步促进低耐性水稻品种根部的镉吸收, 并降低TF, 但对高镉耐性水稻品种根部的镉吸收及TF无显著影响(表1)。在添加镉的处理中, 低耐性水稻品种的BCF、TF亦均显著高于高耐性水稻品种, 地上部镉含量显著高于高耐性水稻品种, 表现出更强的镉吸收与转运能力, 但高耐性水稻品种吸收的镉主要积累在根部(表1); 接种菌株显著降低了不同耐性水稻品种各部位的镉含量, 其主要作用机制是降低了镉污染水稻的BCF, 降低了水稻根系的镉吸收, 但对其TF无显著影响。可见, 低镉耐性水稻品种具有更高的TF, 吸收的镉更易转移并积累至地上部, 而高镉耐性水稻品种吸收的镉主要积累在根部, 两者在应答镉污染上表现出不同的适应对策。低镉耐性水稻品种根部吸收的镉转移至地上部, 将直接降低水稻的光合作用与生长, 这是导致其镉耐性降低的主要原因[9]。前人研究表明, 土壤微生物能够通过生物吸附、生物积累、沉淀、络合和转化等方式来缓解土壤重金属对植物的胁迫[15]。一些菌株可通过固定土壤中的镉[6], 促进土壤钙、镁等元素的淋溶[16], 改变土壤酶活性和镉的生物有效性[8], 从而降低水稻籽粒中镉的积累。本研究发现, 接种假单胞菌TCd-1显著降低了镉污染下水稻各部位的镉含量, 主要表现为降低了水稻根系对镉的吸收, 从而抑制了水稻的镉富集作用。表明假单胞菌TCd-1参与了水稻的镉富集过程, 这可能与假单胞菌TCd-1既是植物根际促生菌, 兼具镉耐性与富集能力, 能够螯合、固定或转化土壤的镉, 减轻镉毒害有关[17]。但菌株对不同镉耐性水稻品种根际过程的影响有待进一步的深入研究加以阐明。
3.2 假单胞菌TCd-1通过降低土壤镉的生物有效性抑制水稻的镉吸收
重金属的生物有效性是指重金属能被生物吸收或对生物产生毒性的有效性状[18]。重金属在土壤中经过络合、吸附、凝聚、溶解、沉淀等各种化学反应可形成各种具有不同生物有效性的赋存形态[19]。镉极易被植物吸收利用[20], 其在土壤中的赋存形态直接影响镉的生物有效性, 其中可交换态(EXC-Cd)与碳酸盐结合态(Crab-Cd)易直接被植物吸收利用, 铁锰氧化物结合态(FeMnO2-Cd)和有机物结合态(OM-Cd)镉可因环境转变为其他形态, 较难被植物利用, 残渣态镉(RES-Cd)几乎不能被植物利用[21]。本研究发现, 在自然背景条件下, 水稻根际土壤中各种形态的镉含量均较低, 接种菌株对不同镉耐性水稻品种根际土壤镉形态均无显著影响(表3)。镉处理下, 低镉耐性水稻品种根际的EXC-Cd含量远低于高镉耐性水稻品种, 但RES-Cd含量显著高于高镉耐性水稻品种, 这可能与低镉耐性水稻品种对镉的吸收及转移能力较强, 为适应镉污染环境, 通过根系分泌、螯合、沉淀等过程钝化并抑制镉吸收有关[22-23]。接种菌株后, 高镉耐性水稻品种根际土壤中EXC-Cd含量降低, FeMnO2-Cd和OM-Cd含量提高, Crab-Cd和RES-Cd含量无显著变化; 类似地, 低镉耐性水稻品种根际土壤的EXC-Cd含量降低, Crab-Cd和OM-Cd含量提高, FeMnO2-Cd和RES-Cd含量无显著变化。表明假单胞菌TCd-1可显著降低水稻根际土壤EXC-Cd含量, 从而有效抑制水稻的镉吸收。菌株亦可提高低镉耐性水稻品种根际土壤Crab-Cd、OM-Cd含量及高镉耐性水稻品种FeMnO2-Cd、OM-Cd含量, 促进易被植物利用的有效态向无效态转化[17], 减少水稻对有效态镉的吸收与富集, 从而降低镉对植物的毒害。这可能与假单胞菌TCd-1的添加能提高水稻根际土壤pH, 进而影响土壤镉形态变化有关[8], 也可能与植物不仅可通过分泌外源调节物质影响土壤重金属的赋存形态[14], 还可利用根际微生物的氧化、还原等生物化学作用降低重金属生物有效性, 减轻重金属对植物和微生物自身的毒害有关[24]。
3.3 假单胞菌TCd-1通过恢复根际土壤酶活性增强了水稻的耐镉能力
土壤酶由土壤动物、土壤微生物和植物根系共同作用产生[25], 是土壤生化反应的催化剂, 能够直接或间接参与重金属的生物地球化学循环过程, 其活性受环境因子等多种因素影响[26]。土壤URE、ACP、SUC和CUE是维持生态系统碳和养分循环过程的重要水解酶[27], CAT和PPO则参与了土壤氧化还原反应, 与土壤有机质的转化、腐殖质的形成密切相关[28]。一些研究表明, 土壤酶活性可敏感地反映土壤理化性质及重金属污染程度[29-30]。本研究表明, 不同镉耐性水稻品种根际土壤酶活性对镉污染表现出不同的应答模式, 其中高镉耐性水稻品种根际土壤中的ACP、URE、CUE活性在镉胁迫下显著升高, 而CAT活性显著降低, SUC、PPO活性无显著变化, 接种菌株后ACP、URE、SUC、CUE和PPO活性显著下降, 而CAT活性显著升高(表2); 低镉耐性水稻品种根际土壤的ACP、URE、SUC和CUE活性均显著下降, CAT和PPO活性显著上升, 接种菌株后, ACP、URE、SUC、CUE和CAT活性显著上升, 而PPO活性下降(表2)。由此可见, 镉污染能够导致水稻根际土壤酶活性发生明显的变化, 这与重金属能占据部分酶的活性位点进而抑制酶活有关, 也可能促进酶活性位点与底物的配合而提升酶活[31]。接种假单胞菌TCd-1则能够明显地修复因镉污染导致的土壤酶活的改变, 有利于土壤物质循环功能的恢复。土壤微生物是土壤酶的主要来源[31], 土壤镉污染会通过抑制土壤微生物的生长, 从而影响酶的分泌与活性[32]。外源添加有益微生物不仅可以影响土壤酶活性, 还能改变重金属有效性及水稻的生理活性, 改善植株根际微生态环境而有利于水稻生长[33]。假单胞菌TCd-1分离自水稻根际土壤, 属于植物根际促生菌, Qian等[34]利用高通量16S rRNA基因测序技术, 发现假单胞菌TCd-1显著改变了不同镉浓度下水稻根际细菌群落的α多样性、群落组成和物种间的相互作用。细菌群落的变化可能有助于创造有利的根际微生物环境, 恢复镉污染下对水稻根际微生物菌群结构平衡, 促进根际土壤生化过程, 进而促进水稻生长, 减少水稻根系对镉的吸收。考察水稻镉含量与土壤酶活及土壤镉形态之间相关性可知(图1), 接种假单胞菌TCd-1前后, 除CAT活性之外, 其余土壤酶活性与水稻各部位的镉含量和土壤镉形态之间的相关性变化显著, 假单胞菌TCd-1降低水稻镉吸收与改变其根际土壤酶活性密切相关。
4. 结论
接种假单胞菌TCd-1可以显著降低10 mg∙kg−1镉污染水稻根部、地上部、籽粒等部位的镉含量, 且显著影响了不同镉耐性水稻品种的镉吸收富集特性, 低镉耐性水稻品种的Cd富集系数和转移系数变化较高镉耐性水稻品种更显著。接种假单胞菌TCd-1降低镉的生物有效性, 并恢复镉污染土壤中的土壤酶活性, 进而有效缓解土壤中镉的毒害作用, 降低水稻各部位对镉的吸收和积累, 最终降低水稻的镉含量。
-
图 1 高镉耐性(上三角矩阵)和低镉耐性(下三角矩阵)水稻接种假单胞菌TCd-1前(A)后(B)的镉含量、镉富集量、土壤酶活性及镉形态的相关性
Whole plant Cd: 全株镉含量; Root Cd: 根镉含量; Aerial part Cd: 地上部镉含量; Grain Cd: 籽粒镉含量; Root Cd accumulation: 根部镉富集量; Grain Cd accumulation: 籽粒镉富集量; Aerial part Cd accumulation: 地上部镉富集量; Whole plant Cd accumulation: 全株镉富集量; PPO: 多酚氧化酶活性; CAT: 过氧化氢酶活性; URE: 脲酶活性; ACP: 酸性磷酸酶活性; SUC: 纤维素酶活性; CUE: 蔗糖酶活性; EXC-Cd: 可交换态镉含量; Crab-Cd: 碳酸盐结合态镉含量; FeMnO2-Cd: 铁锰氧化物结合态镉含量; OM-Cd: 有机结合态镉含量; RES-Cd: 残渣态镉含量。蓝色表示负相关, 红色表示正相关, 颜色越深, 相关性越强。右边的数值代表Pearson相关性指数。
Figure 1. Correlation among Cd content, Cd accumulation, soil enzyme activity and soil Cd forms contents for high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’ (upper triangular matrix) and low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139’ (lower triangular matrix) before (A) and after (B) Pseudomonas TCd-1 inoculation
PPO: polyphenol oxidase activity; CAT: catalase activity; URE: urease activity; ACP: acid phosphatase activity; SUC: cellulase activity; CUE: invertase activity; EXC-Cd: exchangeable Cd content; Crab-Cd: carbonate bound Cd content; FeMnO2-Cd: Fe-Mn oxides bound Cd content; OM-Cd: organic matter Cd content; RES-Cd: residual Cd content. Blue indicates a negative correlation, red indicates a positive correlation, the darker the color, the stronger the correlation. The numbers on the right represent the Pearson index.
表 1 菌和Cd互作处理对不同镉耐性水稻各部位镉含量、富集系数(BCF)、转移系数(TF)及镉富集量的影响
Table 1 Effects of Pseudomonas TCd-1, Cd and their interaction on Cd contents, bioconcentration factor (BCF), translocation factor (TF) and Cd accumulation of different Cd-tolerant varieties of rice
处理
Treatment镉含量 Cadmium content (mg∙kg−1) 富集系数
BCF转移系数
TF镉富集量 Cadmium accumulation (μg∙plant−1) 根部
Root地上部
Aerial part籽粒
Grain全株
Whole plant根部
Root地上部
Aerial part籽粒
Grain全株
Whole plantTY-CK 0.28±0.04g 0.05±0.02f 0.03±0.00d 0.09±0.02e 0.52±0.10de 0.18±0.03d 4.05±0.31f 3.51±1.06f 0.99±0.24d 7.56±1.38f TY-CKB 0.33±0.03g 0.09±0.03f 0.06±0.01d 0.12±0.03e 0.67±0.18cde 0.26±0.08d 4.07±0.22f 6.99±2.58f 2.25±0.38d 11.06±2.88f TY-Cd 35.72±0.21a 3.47±0.21c 0.84±0.01b 7.53±0.42b 0.74±0.04cd 0.10±0.01e 342.60±13.33a 231.57±5.70b 28.94±2.62a 574.17±16.71a TY-CdB 24.83±0.10b 2.07±0.10d 0.60±0.03c 4.93±0.16c 0.48±0.02e 0.08±0.00e 227.06±5.92b 131.69±6.66c 20.37±1.46c 358.75±12.58b BX-CK 0.55±0.03f 1.50±0.06e 0.02±0.01d 1.39±0.05d 7.74±0.28b 2.75±0.08d 3.84±0.33f 81.81±3.74c 0.67±0.31d 85.64±4.01e BX-CKB 1.69±0.07e 1.46±0.02e 0.08±0.02d 1.49±0.02d 8.26±0.10a 0.86±0.04b 16.13±0.57e 100.47±5.83d 2.69±0.67d 116.60±6.40d BX-Cd 13.18±0.02c 8.47±0.43a 1.33±0.01a 9.07±0.40a 0.89±0.39c 0.64±0.03c 65.34±2.39c 289.05±8.20a 22.96±2.22b 354.38±10.56b BX-CdB 6.30±0.06d 4.52±0.25b 0.81±0.08b 4.74±0.23c 0.47±0.02e 0.72±0.03c 45.87±1.03d 235.69±1.55b 22.98±1.09b 281.56±2.33c 显著性 Significance 水稻品种
Rice variety (V)** ** ** ** ** ** ** ** NS ** 镉处理
Cadmium treatment (Cd)** ** ** ** ** ** ** ** ** ** 菌处理
Bacterial treatment (B)** ** ** ** NS ** ** ** * ** V×Cd ** ** ** ** ** ** ** NS NS ** V×B ** ** ** ** NS ** ** ** ** ** Cd×B ** ** ** ** ** ** ** ** ** ** V×Cd×B ** ** ** ** * ** ** ** ** ** 表中同列不同小写字母表示处理间在 P<0.05水平差异显著; *和**分别表示在 P<0.05和 P<0.01水平差异显著; NS表示无显著性差异。TY: 高镉耐性水稻品种‘特优671’; BX: 低镉耐性品种‘百香139’; CK: 不加镉且不接种菌株; CKB: 不加镉但接种菌株; Cd: 加镉但不接种菌株; CdB: 加镉且接种菌株。In the table, different lowercase letters in the same column mean significant differences among treatments at P<0.05. * and ** mean significant differences at P<0.05 and P<0.01, respectively. NS means no significant difference. TY: high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’; BX: low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139; CK: control treatment without Cd and Pseudomonas TCd-1; CKB: control treatment without Cd but with Pseudomonas TCd-1 inoculation; Cd: treatment of 10 mg·kg−1 Cd; CdB: treatment with inoculation of Pseudomonas TCd-1 and 10 mg·kg−1 Cd. 表 2 菌和Cd互作处理对不同镉耐性水稻品种根际土壤酶活性的影响
Table 2 Effect of Pseudomonas TCd-1, Cd and their interaction on enzymes activities in rhizosphere soil of different Cd-tolerant varieties of rice
处理
Treatment酸性磷酸酶
Acid phosphatase (ACP)
[mg∙g−1(FW)∙(24 h)−1]脲酶
Urease (URE)
[mg∙g−1(FW)∙
(24 h)−1]蔗糖酶
Sucrase (SUC)
[mg∙g−1(FW)∙
(24 h)−1]纤维素酶
Cellulase
(CUE)
[mg∙g−1(FW)∙(24 h)−1]过氧化氢酶
Catalase
(CAT)
[mL∙g−1(FW)∙(20 min−1]多酚氧化酶
Polyphenol oxidase (PPO)
[mg∙g−1(FW)∙
(24 h)−1]TY-CK 1.06±0.01d 1.47±0.02f 0.46±0.01a 13.02±0.86b 0.46±0.01a 16.16±1.00a TY-CKB 1.20±0.01c 1.49±0.00f 0.46±0.03a 14.09±0.11a 0.45±0.00a 17.07±0.30a TY-Cd 1.39±0.01a 1.81±0.02c 0.47±0.02a 14.44±0.34a 0.39±0.00c 16.08±0.48a TY-CdB 1.29±0.01b 1.64±0.00e 0.35±0.00c 12.10±0.50c 0.41±0.01b 14.24±0.77b BX-CK 0.98±0.01e 2.16±0.01a 0.29±0.01d 8.88±0.030d 0.36±0.00d 14.59±0.46b BX-CKB 0.96±0.01e 1.33±0.02g 0.29±0.00d 9.18±0.13d 0.39±0.01c 16.01±0.74a BX-Cd 0.86±0.00f 1.74±0.02d 0.24±0.01e 7.70±0.030e 0.39±0.00c 16.37±0.75a BX-CdB 1.09±0.12d 1.95±0.03b 0.39±0.02b 13.95±0.04a 0.41±0.01b 14.34±0.24b 显著性 Significance 水稻品种
Rice variety (V)** ** ** ** ** * 镉处理
Cd treatment (Cd)** ** NS ** ** * 菌处理
Bacterial treatment (B)** ** NS ** ** * V×Cd ** ** ** ** ** * V×B * ** ** ** ** NS Cd×B NS ** NS ** NS ** V×Cd×B ** ** ** ** ** NS 表中同列不同小写字母表示处理间在P<0.05水平差异显著; *和**分别表示在P<0.05和P<0.01水平差异显著; NS表示无显著性差异。TY: 高镉耐性水稻品种‘特优671’; BX: 低镉耐性品种‘百香139’; CK: 不加镉且不接种菌株; CKB: 不加镉但接种菌株; Cd: 加镉但不接种菌株; CdB: 加镉且接种菌株。In the table, different lowercase letters in the same column mean significant differences among treatments at P<0.05. * and ** mean significant differences at P<0.05 and P<0.01, respectively. NS means no significant difference. TY: high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’; BX: low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139; CK: control treatment without Cd and Pseudomonas TCd-1; CKB: control treatment without Cd but with Pseudomonas TCd-1 inoculation; Cd: treatment of 10 mg·kg−1 Cd; CdB: treatment with inoculation of Pseudomonas TCd-1 and 10 mg·kg−1 Cd. 表 3 菌和镉互作处理对不同镉耐性水稻根际土壤中不同形态镉含量的影响
Table 3 Effect of Pseudomonas TCd-1, Cd and their interaction on different forms of cadmium in rhizosphere soil of different Cd-tolerant varieties of rice
处理
Treatment可交换态镉
Exchangeable cadmium
(EXC-Cd)碳酸盐结合态镉
Carbonate bound cadmium
(Crab-Cd)铁锰氧化结合态镉
Fe-Mn oxides bound cadmium
(FeMnO2-Cd)有机态镉
Organic matter cadmium
(OM-Cd)残渣态镉
Residual cadmium
(RES-Cd)mg·kg−1 TY-CK 0.08±0.00e 0.04±0.00c 0.03±0.00d 0.01±0.01c 0.01±0.00c TY-CKB 0.06±0.01e 0.05±0.01c 0.03±0.00d 0.02±0.00c 0.01±0.00c TY-Cd 4.09±0.55a 2.05±0.30a 1.92±0.29b 0.72±0.12b 0.59±0.09b TY-CdB 3.44±0.28b 1.81±0.15a 2.68±0.20a 0.98±0.08a 0.70±0.06b BX-CK 0.04±0.01e 0.02±0.01c 0.02±0.00d 0.01±0.00c 0.07±0.01c BX-CKB 0.05±0.01e 0.02±0.01c 0.01±0.00d 0.01±0.00c 0.08±0.01c BX-Cd 2.73±0.11c 1.39±0.23b 0.59±0.03c 0.80±0.07b 3.94±0.53a BX-CdB 2.08±0.14d 1.85±0.11a 0.76±0.05c 1.00±0.08a 4.07±0.24a 显著性 Significance 水稻品种 Rice variety (V) ** * ** NS ** 镉处理 Cadmium treatment (Cd) ** ** ** ** ** 菌处理 Bacterial treatment (B) * NS ** ** NS V×Cd ** * ** NS ** V×B NS * * NS NS Cd×B * NS ** ** NS V×Cd×B NS * * NS NS 表中同列不同小写字母表示处理间在P<0.05水平差异显著; *和**分别表示在P<0.05和P<0.01水平差异显著; NS表示无显著性差异。TY: 高镉耐性水稻品种‘特优671’; BX: 低镉耐性品种‘百香139’; CK: 不加镉且不接种菌株; CKB: 不加镉但接种菌株; Cd: 加镉但不接种菌株; CdB: 加镉且接种菌株。In the table, different lowercase letters in the same column mean significant differences among treatments at P<0.05. * and ** mean significant differences at P<0.05 and P<0.01, respectively. NS means no significant difference. TY: high Cd-tolerant rice variety ‘Teyou 671’; BX: low Cd-tolerant rice variety ‘Baixiang 139; CK: control treatment without Cd and Pseudomonas TCd-1; CKB: control treatment without Cd but with Pseudomonas TCd-1 inoculation; Cd: treatment of 10 mg·kg−1 Cd; CdB: treatment with inoculation of Pseudomonas TCd-1 and 10 mg·kg−1 Cd. -
[1] SHARMA R K, ARCHANA G. Cadmium minimization in food crops by cadmium resistant plant growth promoting rhizobacteria[J]. Applied Soil Ecology, 2016, 107: 66−78 doi: 10.1016/j.apsoil.2016.05.009
[2] CHEN H P, TANG Z, WANG P, et al. Geographical variations of cadmium and arsenic concentrations and arsenic speciation in Chinese rice[J]. Environmental Pollution, 2018, 238: 482−490 doi: 10.1016/j.envpol.2018.03.048
[3] 杨海, 黄新, 林子增, 等. 重金属污染土壤微生物修复技术研究进展[J]. 应用化工, 2019, 48(6): 1417−1422 doi: 10.3969/j.issn.1671-3206.2019.06.039 YANG H, HUANG X, LIN Z Z, et al. Research progress on microbial remediation technology for heavy metal contaminated soil[J]. Applied Chemical Industry, 2019, 48(6): 1417−1422 doi: 10.3969/j.issn.1671-3206.2019.06.039
[4] 陆仲烟, 宋正国, 郭军康, 等. 伯克氏菌对水稻种子萌发及初生幼苗耐镉性的影响[J]. 农业资源与环境学报, 2013, 30(6): 87−90 doi: 10.3969/j.issn.1005-4944.2013.06.018 LU Z Y, SONG Z G, GUO J K, et al. Effects of Burkholderia on rice seed germination and Cd-tolerance of rice seedlings[J]. Journal of Agricultural Resources and Environment, 2013, 30(6): 87−90 doi: 10.3969/j.issn.1005-4944.2013.06.018
[5] 何小三, 王微, 肖清铁, 等. 铜绿假单胞菌对镉胁迫水稻苗期生长与镉积累的影响[J]. 中国生态农业学报, 2018, 26(6): 884−891 HE X S, WANG W, XIAO Q T, et al. Effects of Pseudomonas aeruginosa on the growth and cadmium accumulation in rice (Oryza sativa L.) seedling under Cd stress[J]. Chinese Journal of Eco-Agriculture, 2018, 26(6): 884−891
[6] LI Y, PANG H D, HE L Y, et al. Cd immobilization and reduced tissue Cd accumulation of rice (Oryza sativa Wuyun-23) in the presence of heavy metal-resistant bacteria[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2017, 138: 56−63 doi: 10.1016/j.ecoenv.2016.12.024
[7] 汪敦飞, 郑新宇, 肖清铁, 等. 铜绿假单胞菌对镉胁迫苗期水稻根系活力及叶片生理特性的影响[J]. 应用生态学报, 2019, 30(8): 2767−2774 WANG D F, ZHENG X Y, XIAO Q T, et al. Effects of Pseudomonas aeruginosa on root activity and leaf physiological characteristics in rice (Oryza sativa L.) seedling under cadmium stress[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2019, 30(8): 2767−2774
[8] WANG Y J, ZHENG X Y, HE X S, et al. Effects of Pseudomonas TCd-1 on rice (Oryza sativa) cadmium uptake, rhizosphere soils enzyme activities and cadmium bioavailability under cadmium contamination[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2021, 218: 112249 doi: 10.1016/j.ecoenv.2021.112249
[9] 文欢欢, 郑新宇, 肖清铁, 等. 镉污染条件下水稻对假单胞菌TCd-1微生物修复的生理响应[J]. 生态学报, 2022, 42(5): 1924−1933 WEN H H, ZHENG X Y, XIAO Q T, et al. Physiological response of cadmium-contaminated rice to Pseudomonas TCd-1 microbial repair[J]. Acta Ecologica Sinica, 2022, 42(5): 1924−1933
[10] 朱胜男. 不同镉耐性水稻间作系统对镉污染的生理响应[D]. 福州: 福建农林大学, 2020 ZHU S N. Physiological response of rice intercropping systems with different cadmium tolerance to cadmium pollution[D]. Fuzhou: Fujian Agriculture and Forestry University, 2020
[11] 关松荫. 土壤酶及其研究法[M]. 北京: 农业出版社, 1986 GUAN S Y. Soil Enzyme and Its Study Method[M]. Beijing: Beijing Agricultural Press, 1986
[12] TESSIER A, CAMPBELL P G C, BISSON M. Sequential extraction procedure for the speciation of particulate trace metals[J]. Analytical Chemistry, 1979, 51(7): 844−851 doi: 10.1021/ac50043a017
[13] 孙亚莉, 徐庆国, 贾巍. 镉胁迫对水稻的影响及其调控技术研究进展[J]. 中国农学通报, 2017, 33(10): 1−6 doi: 10.11924/j.issn.1000-6850.casb16050157 SUN Y L, XU Q G, JIA W. Advance in cadmium stress on rice and its regulation and control technology[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2017, 33(10): 1−6 doi: 10.11924/j.issn.1000-6850.casb16050157
[14] LI Z M, LIANG Y, HU H W, et al. Speciation, transportation, and pathways of cadmium in soil-rice systems: a review on the environmental implications and remediation approaches for food safety[J]. Environment International, 2021, 156: 106749 doi: 10.1016/j.envint.2021.106749
[15] SIRIPORNADULSIL S, SIRIPORNADULSIL W. Cadmium-tolerant bacteria reduce the uptake of cadmium in rice: potential for microbial bioremediation[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2013, 94: 94−103 doi: 10.1016/j.ecoenv.2013.05.002
[16] MA Y, OLIVEIRA R S, FREITAS H, et al. Biochemical and molecular mechanisms of plant-microbe-metal interactions: relevance for phytoremediation[J]. Frontiers in Plant Science, 2016, 7: 918
[17] 马莹, 骆永明, 滕应, 等. 根际促生菌及其在污染土壤植物修复中的应用[J]. 土壤学报, 2013, 50(5): 1021−1031 MA Y, LUO Y M, TENG Y, et al. Plant growth promoting rhizobacteria and their role in phytoremediation of heavy metal contaminated soils[J]. Acta Pedologica Sinica, 2013, 50(5): 1021−1031
[18] 娄庭, 杨丽娟. 土壤重金属的生物有效性及对植物的毒害作用[J]. 吉林农业科学, 2009, 34(5): 28−32 doi: 10.3969/j.issn.1003-8701.2009.05.010 LOU T, YANG L J. Bioavailability of heavy metals in the soil and the toxic effect of plant[J]. Journal of Jilin Agricultural Sciences, 2009, 34(5): 28−32 doi: 10.3969/j.issn.1003-8701.2009.05.010
[19] 罗海艳, 李丹阳, 刘寿涛, 等. 铁锰改性椰壳炭对土壤镉形态及水稻吸收积累镉的影响[J]. 环境科学研究, 2019, 32(5): 857−865 LUO H Y, LI D Y, LIU S T, et al. Effects of Fe-Mn modified coconut shell biochar on cadmium speciation and accumulation in rice[J]. Research of Environmental Sciences, 2019, 32(5): 857−865
[20] 刘霞, 刘树庆, 王胜爱, 等. 重金属复合污染对土壤微生物生态特征的影响研究[J]. 农业环境科学学报, 2007, 26(S1): 17−21 LIU X, LIU S Q, WANG S A, et al. Influence on ecological characteristics of microorganisms in soils polluted by compound heavy metals[J]. Journal of Agro-Environment Science, 2007, 26(S1): 17−21
[21] 张芬, 杨长明, 潘睿捷. 青山水库表层沉积物重金属污染特征及生态风险评价[J]. 应用生态学报, 2013, 24(9): 2625−2630 ZHANG F, YANG C M, PAN R J. Pollution characteristics and ecological risk assessment of heavy metals in surface sediments of Qingshan Reservoir in Lin’an City, Zhejiang Province of East China[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2013, 24(9): 2625−2630
[22] 张锡洲, 张洪江, 李廷轩, 等. 水稻镉耐性差异及镉低积累种质资源的筛选[J]. 中国生态农业学报, 2013, 21(11): 1434−1440 doi: 10.3724/SP.J.1011.2013.01434 ZHANG X Z, ZHANG H J, LI T X, et al. Differences in Cd-tolerance of rice and screening for Cd low-accumulation rice germplasm resources[J]. Chinese Journal of Eco-Agriculture, 2013, 21(11): 1434−1440 doi: 10.3724/SP.J.1011.2013.01434
[23] 于辉, 杨中艺, 杨知建, 等. 不同类型镉积累水稻细胞镉化学形态及亚细胞和分子分布[J]. 应用生态学报, 2008, 19(10): 2221−2226 YU H, YANG Z Y, YANG Z J, et al. Chemical forms and subcellular and molecular distribution of Cd in two Cd-accumulation rice genotypes[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2008, 19(10): 2221−2226
[24] 张连忠, 路克国, 王宏伟, 等. 重金属和生物有机肥对苹果根区土壤微生物的影响[J]. 水土保持学报, 2005, 19(2): 92−95 doi: 10.3321/j.issn:1009-2242.2005.02.024 ZHANG L Z, LU K G, WANG H W, et al. Effect of heavy metal and bio-fertilizer on microorganisms in soil of apple root[J]. Journal of Soil Water Conservation, 2005, 19(2): 92−95 doi: 10.3321/j.issn:1009-2242.2005.02.024
[25] 曾路生, 廖敏, 黄昌勇, 等. 镉污染对水稻土微生物量、酶活性及水稻生理指标的影响[J]. 应用生态学报, 2005, 16(11): 2162−2167 doi: 10.3321/j.issn:1001-9332.2005.11.031 ZENG L S, LIAO M, HUANG C Y, et al. Effects of Cd contamination on paddy soil microbial biomass and enzyme activities and rice physiological indices[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2005, 16(11): 2162−2167 doi: 10.3321/j.issn:1001-9332.2005.11.031
[26] 宫占元, 张国庆, 于文莹, 等. 哈茨木霉菌对水稻幼苗根际土壤微生物和酶活性的影响[J]. 干旱地区农业研究, 2013, 31(4): 167−171 doi: 10.3969/j.issn.1000-7601.2013.04.031 GONG Z Y, ZHANG G Q, YU W Y, et al. Effects of Trichoderma harzianum on microorganisms and enzymatic activities in rhizosphere soil during rice seedling stage[J]. Agricultural Research in the Arid Areas, 2013, 31(4): 167−171 doi: 10.3969/j.issn.1000-7601.2013.04.031
[27] 耿玉清, 王冬梅. 土壤水解酶活性测定方法的研究进展[J]. 中国生态农业学报, 2012, 20(4): 387−394 doi: 10.3724/SP.J.1011.2012.00387 GENG Y Q, WANG D M. Research advances on the measurement methods for soil hydrolytic enzymes activities[J]. Chinese Journal of Eco-Agriculture, 2012, 20(4): 387−394 doi: 10.3724/SP.J.1011.2012.00387
[28] 许云翔, 何莉莉, 刘玉学, 等. 施用生物炭6年后对稻田土壤酶活性及肥力的影响[J]. 应用生态学报, 2019, 30(4): 1110−1118 XU Y X, HE L L, LIU Y X, et al. Effects of biochar addition on enzyme activity and fertility in paddy soil after six years[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2019, 30(4): 1110−1118
[29] 刘树庆. 保定市污灌区土壤的Pb、Cd污染与土壤酶活性关系研究[J]. 土壤学报, 1996, 33(2): 175−182 doi: 10.11766/trxb199505260208 LIU S Q. Relationship between soil Pb and Cd pollution and enzyme activities in waste water irrigated area of Baoding City[J]. Acta Pedologica Sinica, 1996, 33(2): 175−182 doi: 10.11766/trxb199505260208
[30] 和文祥, 陈会明, 冯贵颖, 等. 汞铬砷元素污染土壤的酶监测研究[J]. 环境科学学报, 2000, 20(3): 338−343 HE W X, CHEN H M, FENG G Y, et al. Study on enzyme index in soils polluted by mercury, chromium and arsenic[J]. Acta Scientiae Circumstantiae, 2000, 20(3): 338−343
[31] 蒲生彦, 王宇, 陈文英, 等. 植物根际土壤酶对重金属污染的响应机制研究综述[J]. 生态毒理学报, 2020, 15(4): 11−20 PU S Y, WANG Y, CHEN W Y, et al. Review on the mechanism of plant rhizosphere soil enzyme response to heavy metal pollution[J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2020, 15(4): 11−20
[32] 罗虹, 刘鹏, 宋小敏. 重金属镉、铜、镍复合污染对土壤酶活性的影响[J]. 水土保持学报, 2006, 20(2): 94−96, 121 doi: 10.3321/j.issn:1009-2242.2006.02.023 LUO H, LIU P, SONG X M. Effect of compound pollution of Cd, Cu and Ni on soil enzyme activities[J]. Journal of Soil and Water Conservation, 2006, 20(2): 94−96, 121 doi: 10.3321/j.issn:1009-2242.2006.02.023
[33] 刘辉, 吴小芹, 任嘉红, 等. 荧光假单胞菌与红绒盖牛肝菌共接种对杨树根际土壤酶活性及微生物多样性的影响[J]. 林业科学, 2019, 55(1): 22−30 doi: 10.11707/j.1001-7488.20190103 LIU H, WU X Q, REN J H, et al. Effect of co-inoculation with Pseudomonas fluorescens and Xerocomus chrysenteron on the soil enzyme activity and microbial diversity in poplar rhizosphere[J]. Scientia Silvae Sinicae, 2019, 55(1): 22−30 doi: 10.11707/j.1001-7488.20190103
[34] QIAN X, LÜ Q X, HE X S, et al. Pseudomonas sp. TCd-1 significantly alters the rhizosphere bacterial community of rice in Cd contaminated paddy field[J]. Chemosphere, 2022, 290: 133257 doi: 10.1016/j.chemosphere.2021.133257
-
期刊类型引用(0)
其他类型引用(6)